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培養(yǎng)細(xì)胞需注意哪些小細(xì)節(jié)?
培養(yǎng)細(xì)胞就像養(yǎng)育孩子一樣,要精心照料,用心呵護(hù)。每天都去看看它們,滿足它們所需要的物質(zhì)需求,防止出現(xiàn)培養(yǎng)箱缺水、二氧化碳不足、溫度不夠等各種小意外,還要注意很多小細(xì)節(jié),以免開展重復(fù)的實驗導(dǎo)致不必要的人力物力浪費(fèi)。
那培養(yǎng)細(xì)胞都要注意哪些小細(xì)節(jié)呢?就讓我們一起來看看吧!
1.細(xì)胞生長的營養(yǎng)來源
不同的細(xì)胞的培養(yǎng)基是不相同的,對于大多數(shù)腫瘤細(xì)胞來說,營養(yǎng)配方一般為:90%合成培養(yǎng)基(DMEM、RPMI1640、MEM等)和10%胎牛血清(FBS);為了防止污染,可以適時加1%雙抗,抗生素的使用應(yīng)為短期。
Q:細(xì)胞培養(yǎng)基配方如何選擇?
A:
一般購買細(xì)胞時,針對不同的細(xì)胞株,會有詳細(xì)的介紹,包括生長的狀態(tài)圖、培養(yǎng)基的類型等。如人源肺癌細(xì)胞A549可用DMEM培養(yǎng)基,在胎牛血清的選擇上也可以選用來源可靠的胎牛血清,能提供較好的營養(yǎng)成分,以滿足細(xì)胞株生長的需要。
Q:如果細(xì)胞生長緩慢,需要增加血清比例嗎?
A:可以。
2.細(xì)胞生長的環(huán)境
舒適無菌的環(huán)境是細(xì)胞健康生活的重要基礎(chǔ)。需要合適的器皿,不同形狀、規(guī)格、用途多樣的培養(yǎng)皿、培養(yǎng)瓶及培養(yǎng)板等,最終進(jìn)入合適的恒溫箱培養(yǎng),如腫瘤細(xì)胞就需37℃,5%CO2的恒溫箱中生長。
Q:細(xì)胞培養(yǎng)板及培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶如何選擇?
A:根據(jù)不同的應(yīng)用選擇不同的培養(yǎng)皿或容量板,如MTS用96孔板,細(xì)胞爬片用24孔,流式分析用6空等
而選擇培養(yǎng)皿還是選擇培養(yǎng)瓶,就細(xì)胞培養(yǎng)狀態(tài)來說差別不大,主要是培養(yǎng)瓶的安全系數(shù)更高一些,數(shù)量也會大一些,但是成本也相對較高,因此沒有特殊要求時,一般用培養(yǎng)皿即可。
Q:血清是否要滅活處理,保證環(huán)境無菌?
A:這取決于您的應(yīng)用。
滅活過程中,會導(dǎo)致血清中某些成分被破壞,如氨基酸,維生素,生長因子等。所以只有在您的實驗對血清有特殊要求時,才會考慮對血清進(jìn)行滅活處理。如您的實驗對血清中的某種組分敏感,需要去除該組分。最常見的情況是需要去除血清中的補(bǔ)體蛋白,因為補(bǔ)體在機(jī)體中參與細(xì)胞殺傷,巨噬細(xì)胞和淋巴細(xì)胞活化,肥大細(xì)胞和血小板組胺釋放,平滑肌收縮等過程,所以一般在免疫學(xué)相關(guān)研究中及肌細(xì)胞和干細(xì)胞的培養(yǎng)過程中需要對血清進(jìn)行滅活處理。
3.細(xì)胞復(fù)蘇與凍存
細(xì)胞復(fù)蘇是指將凍存的細(xì)胞解凍之后再重新培養(yǎng),細(xì)胞從冷凍停止生長狀態(tài)恢復(fù)生長的過程。
Q:細(xì)胞復(fù)蘇后,為什么很多難以貼壁?
A:忽略培養(yǎng)基的問題,主要考慮細(xì)胞凍存時狀態(tài)差或者復(fù)蘇時動作太慢導(dǎo)致細(xì)胞死亡。切記最重要的融化速度要快,可不時搖動冷凍管,使之盡快通過最易受損的溫度段(-5~0℃)。
細(xì)胞凍存則是將細(xì)胞放在低溫(-70℃~196℃)環(huán)境,降低細(xì)胞內(nèi)的代謝活動,最/大限度的保存細(xì)胞活力,以便長期存儲。
Q:目前細(xì)胞凍存液多采用的什么配方?
A:目前細(xì)胞凍存多采用DMSO二甲基亞砜或甘油作保護(hù)劑,細(xì)胞凍存液的配方有很多種,如培養(yǎng)基:血清:DMSO=7:2:1或8:1:1或5:4:1,或直接用血清:DMSO=9:1,一般高濃度血清有助于維護(hù)細(xì)胞活力,復(fù)蘇存活率在80%~90%以上。
4.細(xì)胞的傳代培養(yǎng)
細(xì)胞在培養(yǎng)過程中不斷增殖,培養(yǎng)皿空間有限,細(xì)胞過密生長就會受到抑制,影響細(xì)胞的狀態(tài),因此我們要把細(xì)胞中的一部分分到別的培養(yǎng)皿里,這樣細(xì)胞才能生長的好。
Q:細(xì)胞傳代培養(yǎng)為什么要選擇對數(shù)期細(xì)胞?
A:
細(xì)胞的生長和分裂,一般遵循以下模式:停滯期,對數(shù)期(指數(shù)期),平穩(wěn)期(平臺期)和衰退期。為了確?;盍?,遺傳穩(wěn)定性和表型穩(wěn)定,必須使細(xì)胞保持在對數(shù)期。一般細(xì)胞長到70%~80%左右就可以傳代了。
除了上述幾個環(huán)節(jié)的關(guān)節(jié)問題外,細(xì)胞培養(yǎng)還有很多小問題如下:
Q:培養(yǎng)基多久換一次?
A:
正常情況下,培養(yǎng)液偏紅色。如果細(xì)胞維持在pH6.5~6.6條件下,培養(yǎng)基變黃,說明培養(yǎng)液中代謝產(chǎn)物已堆積到一定量,細(xì)胞會脫落死亡,需要更換新鮮培養(yǎng)液。一般細(xì)胞生長旺盛時1~2天換一次,生長緩慢時,3~4天亦可。針對復(fù)蘇后的細(xì)胞,建議隔天換液。
Q:血清應(yīng)如何融解?
A:從冰箱中取出血清,放于2-8℃融化,融化過程中不時旋轉(zhuǎn)(swirling mix)混勻。充分融解后分裝或平衡到室溫后使用。
Q:如果細(xì)胞形態(tài)不清晰或有異物等,如何處理?
A:可以考慮如下操作:首先,倒掉舊的培養(yǎng)基,用新的培養(yǎng)基或者PBS洗滌2-3次,再開始正式的消化、吹打。其次,把吹打下來的細(xì)胞懸液加入到新的培養(yǎng)瓶內(nèi)。后續(xù)再密切觀察。
Q:血清中出現(xiàn)絮狀沉淀是否需要去除?如何去除?
A:多種原因可能導(dǎo)致絮狀沉淀的形成,最常見的原因之一是融化過程中,脂蛋白聚集所致。該現(xiàn)象一般不會影響產(chǎn)品質(zhì)量??梢?00g離心5分鐘,取上清,然后過濾。根據(jù)需要選擇合適的濾膜孔徑,一般常用的是0.22um
PES材質(zhì)的濾膜。為避免濾膜阻塞,建議離心后取上清加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾而不是直接過濾血清。
總之,細(xì)胞培養(yǎng)是后續(xù)實驗的基石,留心各種細(xì)節(jié)問題,嚴(yán)守滅菌處理的程序,保護(hù)好自己養(yǎng)的細(xì)胞,這樣才能快樂地進(jìn)行后續(xù)的實驗。